اثرات همزیستی قارچ‌های مایکوریزا بر برخی شاخص های گیاهی و فاکتورهای فیتوشیمیایی Lavandula angustifolia L.

نوع مقاله : مقاله کامل علمی پژوهشی

نویسندگان

1 دانش‌آموخته کارشناسی‌ارشد مرتعداری، گرایش گیاهان دارویی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.

2 نویسنده مسئول، دانشیار گروه مدیریت مرتع، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.

3 دانشیار گروه مدیریت مرتع، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.

4 کارشناس‌ارشد علوم باغبانی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.

چکیده

سابقه و هدف: مایکوریزا، قارچ‌هایی خاکزی هستند که از طریق همزیستی با ریشه گیاهان و تولید یک سیستم بیولوژیکی، دسترسی گیاهان به عناصر غذایی را تسهیل نموده و با افزایش میزان بهره‌وری، موجب بهبود استقرار و مقاومت به تنش‌های محیطی می‌شوند. در مقایسه با ریشه گیاهان، ریسه‌های قارچ های مایکوریزا در مساحت وسیع‌تری از خاک گسترش می‌یابند و فراهمی مواد مغذی برای گیاهان را امکانپذیر می‌کنند. قارچ‌ها رشد گیاه را از طریق جذب مواد معدنی از خاک و مقاوم‌تر کردن گیاهان در برابر تنش‌های محیطی تقویت می‌کنند و مانند یک کود بیولوژیک عمل نموده، فعالیت موجودات زنده خاک را افزایش داده. ساختمان خاک را بهبود می‌بخشند و این امر باعث رشد بهتر گیاه می‌شود. در این مقاله اثرات همزیستی پنج قارچ مایکوریزا با گیاه دارویی اسطوخودوس (Lavandula angustifolia L.) بر برخی شاخص های گیاهی و فاکتورهای فیتوشیمیایی آن گیاه مورد بررسی قرار گرفت.

مواد و روش‌ها: تحقیق حاضر بصورت طرح کاملاٌ تصادفی با 6 تیمار دارای 5 تکرار و در مجموع 30 گلدان اجرا شد. تیمارهای این آزمایش شامل تلقیح گونه‌های مختلف قارچ مایکوریزا از جنس Glomus (G. intraradices, G. geosporum, G. mosseae, G. fasciculatum, G. versiform) و شاهد بودند. در انتهای فصل رشد، برخی شاخص‌های گیاهی (طول بوته، تعداد شاخه جانبی، تعداد برگ در یک شاخه، طول و عرض برگ، قطر ساقه، وزن خشک اندام‌های هوایی، و وزن خشک ریشه) و فاکتورهای فیتوشیمیایی (محتوای ترکیبات فنولی و فلاونوئیدی کل، ظرفیت آنتی اکسیدانی، میزان پرولین و همچنین رنگیزه‌های فتوسنتزی شامل کلروفیل a، b، کلروفیل کل و کارتنوئید) اسطوخودوس اندازه‌گیری شدند. داده‌ها با نرم افزار SPSS (Version 21) مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفته و نرمال بودن آنها با آزمون کولموگروف- اسمیرونوف بررسی شد و پس از تجزیه واریانس، مقایسه میانگین‌ها با استفاده از آزمون دانکن صورت پذیرفت.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که اغلب قارچ‌های مایکوریزا تاثیر معنی داری(01/0 < p) بر اغلب شاخص های گیاهی و فاکتورهای فیتوشیمیایی اسطوخودوس داشتند. بطوریکه در پایه‌های گیاهی تلقیح شده با قارچ‌های G. mosseae، G. geosporum وG. intraradices در اکثر شاخص‌های گیاهی افزایش معنی داری (01/0 < p) مشاهده شد و تلقیح آنها با قارچ مایکوریزا اختلاف معنی‌داری (01/0 < p) در صفات تعداد شاخه جانبی، قطر ساقه، تعداد برگ در یک شاخه و همچنین وزن خشک ریشه و اندام‌های هوایی ایجاد نمود. تلقیح این قارچ‌ها اثر مثبتی بر بهبود محتوای ترکیبات فنولی، فلاونوئیدی و ظرفیت آنتی اکسیدانی گیاه داشت. نتایج مقایسه میانگین‌ها نشان دادن حداکثر میزان کارتنوئید در تیمار استفاده از گونه G. mosseae (85/1 میلی گرم) و حداقل میزان کارتنوئید در تیمار استفاده از گونه شاهد (81/0 میلی گرم) دیده شد.
نتیجه گیری: نتایج نشانگر آن است که ریشه گیاه اسطوخدوس با اغلب گونه‌های قارچ مایکوریزای بکار رفته در این تحقیق رابطه همزیستی برقرار نموده است. بطوریکه اغلب شاخص‌های گیاهی و فاکتورهای فیتوشیمیایی بررسی شده در این تحقیق نسبت به تیمار شاهد افزایش معنی‌داری نشان داد. با توجه به نتایج بدست آمده گونه‌های G. mosseae، G. intraradices و G. geosporum می‌تواند بهترین شرایط را برای رشد و تولید مطلوب گیاه چندمنظوره اسطوخدوس فراهم نموده و به عنوان کود زیستی جایگزین مناسبی برای کودهای شیمیایی گردد. لذا بر اساس نتایج پژوهش حاضر و با توجه به سازگاری مایکوریزا با محیط زیست و انواع تنش‌های محیطی، استفاده از قارچ های مذکور به منظور افزایش عملکرد گیاه اسطوخدوس قابل توصیه است.
سابقه و هدف: مایکوریزا، قارچ‌هایی خاکزی هستند که از طریق همزیستی با ریشه گیاهان و تولید یک سیستم بیولوژیکی، دسترسی گیاهان به عناصر غذایی را تسهیل نموده و با افزایش میزان بهره‌وری، موجب بهبود استقرار و مقاومت به تنش‌های محیطی می‌شوند. در مقایسه با ریشه گیاهان، ریسه‌های قارچ های مایکوریزا در مساحت وسیع‌تری از خاک گسترش می‌یابند و فراهمی مواد مغذی برای گیاهان را امکانپذیر می‌کنند. قارچ‌ها رشد گیاه را از طریق جذب مواد معدنی از خاک و مقاوم‌تر کردن گیاهان در برابر تنش‌های محیطی تقویت می‌کنند و مانند یک کود بیولوژیک عمل نموده، فعالیت موجودات زنده خاک را افزایش داده. ساختمان خاک را بهبود می‌بخشند و این امر باعث رشد بهتر گیاه می‌شود. در این مقاله اثرات همزیستی پنج قارچ مایکوریزا با گیاه دارویی اسطوخودوس (Lavandula angustifolia L.) بر برخی شاخص های گیاهی و فاکتورهای فیتوشیمیایی آن گیاه مورد بررسی قرار گرفت.

مواد و روش‌ها: تحقیق حاضر بصورت طرح کاملاٌ تصادفی با 6 تیمار دارای 5 تکرار و در مجموع 30 گلدان اجرا شد. تیمارهای این آزمایش شامل تلقیح گونه‌های مختلف قارچ مایکوریزا از جنس Glomus (G. intraradices, G. geosporum, G. mosseae, G. fasciculatum, G. versiform) و شاهد بودند. در انتهای فصل رشد، برخی شاخص‌های گیاهی (طول بوته، تعداد شاخه جانبی، تعداد برگ در یک شاخه، طول و عرض برگ، قطر ساقه، وزن خشک اندام‌های هوایی، و وزن خشک ریشه) و فاکتورهای فیتوشیمیایی (محتوای ترکیبات فنولی و فلاونوئیدی کل، ظرفیت آنتی اکسیدانی، میزان پرولین و همچنین رنگیزه‌های فتوسنتزی شامل کلروفیل a، b، کلروفیل کل و کارتنوئید) اسطوخودوس اندازه‌گیری شدند. داده‌ها با نرم افزار SPSS (Version 21) مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفته و نرمال بودن آنها با آزمون کولموگروف- اسمیرونوف بررسی شد و پس از تجزیه واریانس، مقایسه میانگین‌ها با استفاده از آزمون دانکن صورت پذیرفت.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که اغلب قارچ‌های مایکوریزا تاثیر معنی داری(01/0 < p) بر اغلب شاخص های گیاهی و فاکتورهای فیتوشیمیایی اسطوخودوس داشتند. بطوریکه در پایه‌های گیاهی تلقیح شده با قارچ‌های G. mosseae، G. geosporum وG. intraradices در اکثر شاخص‌های گیاهی افزایش معنی داری (01/0 < p) مشاهده شد و تلقیح آنها با قارچ مایکوریزا اختلاف معنی‌داری (01/0 < p) در صفات تعداد شاخه جانبی، قطر ساقه، تعداد برگ در یک شاخه و همچنین وزن خشک ریشه و اندام‌های هوایی ایجاد نمود. تلقیح این قارچ‌ها اثر مثبتی بر بهبود محتوای ترکیبات فنولی، فلاونوئیدی و ظرفیت آنتی اکسیدانی گیاه داشت. نتایج مقایسه میانگین‌ها نشان دادن حداکثر میزان کارتنوئید در تیمار استفاده از گونه G. mosseae (85/1 میلی گرم) و حداقل میزان کارتنوئید در تیمار استفاده از گونه شاهد (81/0 میلی گرم) دیده شد.
نتیجه گیری: نتایج نشانگر آن است که ریشه گیاه اسطوخدوس با اغلب گونه‌های قارچ مایکوریزای بکار رفته در این تحقیق رابطه همزیستی برقرار نموده است. بطوریکه اغلب شاخص‌های گیاهی و فاکتورهای فیتوشیمیایی بررسی شده در این تحقیق نسبت به تیمار شاهد افزایش معنی‌داری نشان داد. با توجه به نتایج بدست آمده گونه‌های G. mosseae، G. intraradices و G. geosporum می‌تواند بهترین شرایط را برای رشد و تولید مطلوب گیاه چندمنظوره اسطوخدوس فراهم نموده و به عنوان کود زیستی جایگزین مناسبی برای کودهای شیمیایی گردد. لذا بر اساس نتایج پژوهش حاضر و با توجه به سازگاری مایکوریزا با محیط زیست و انواع تنش‌های محیطی، استفاده از قارچ های مذکور به منظور افزایش عملکرد گیاه اسطوخدوس قابل توصیه است.

کلیدواژه‌ها

موضوعات

عنوان مقاله [English]

The effects of symbiotic soil mycorrhizal fungi on some plant indices and phytochemical factors of Lavandula angustifolia L.

نویسندگان [English]

  • Hamid Reza Nazari 1
  • Mohamad Rahim Forouzeh 2
  • Hamid Niknahad 3
  • Sadegh Atashi 4
1 M.Sc. Graduate of Rangeland Sciences, Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources, Gorgan, Iran.
2 Corresponding Author, Associate Prof., Dept. of Rangeland Sciences, Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources, Gorgan, Iran.
3 Associate Prof., Dept. of Rangeland Sciences, Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources, Gorgan, Iran.
4 M.Sc. in Horticulture, Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources, Gorgan, Iran.
چکیده [English]

Background and objectives: Mycorrhiza are soil fungi that facilitate plants' access to nutrients through symbiosis with plant roots and the production of a biological system. By increasing productivity, they improve plant establishment and resistance to environmental stresses. Compared to plant roots, mycorrhizal fungal hyphae spread over a wider area of soil, making nutrients available to plants. Fungi enhance plant growth by absorbing minerals from the soil and making plants more resistant to environmental stresses. They act as a biological fertilizer, increasing the activity of soil organisms, and improve soil structure, which leads to better plant growth.This article examines the effects of five mycorrhizal fungi symbiosis with the medicinal plant Lavandula angustifolia on some plant indices and its phytochemical factors.

Materials and methods: The present study was conducted as a completely randomized design with 6 treatments, 5 replications, and a total of 30 pots. The treatments included inoculation of various species of mycorrhizal fungi from the genus Glomus (G. intraradices, G. geosporum, G. mosseae, G. fasciculatum, G. versiform) and controls. At the end of the growing season, some plant indices (plant length, number of lateral branches, number of leaves per branch, leaf length and width, stem diameter, dry weight of aerial organs, and dry weight of roots) and phytochemical factors (content of total phenolic and flavonoid compounds, antioxidant capacity, proline content, as well as photosynthetic pigments including chlorophyll a, b, total chlorophyll, and carotenoids) of Lavandula angustifolia were measured.The data were analyzed using SPSS software (Version 21), and their normality was checked using the Kolmogorov-Smirnov test. After analysis of variance, mean comparisons were performed using Duncan's test.

Results: The results indicated that most mycorrhizal fungi had a significant effect (p< 0.01)on most of plant indices and phytochemical factors of Lavandula angustifolia. Thus, in plants individuals inoculated with the fungi G. mosseae, G. geosporum, and G. intraradices a significant increase (p< 0.01) in most plant indices was observed. Notably, the mycorrhizal fungi significantly affected traits such as the number of lateral branches, stem diameter, number of leaves per branch, and the dry weight of both roots and aerial parts (p< 0.01). Additionally, inoculation with these fungi had a positive effect on improving the content of phenolic compounds, flavonoids, and antioxidant capacity of the plant. Results from mean comparisons demonstrated the maximum carotenoid content in the treatment using the species G. mosseae (1.85 mg) and the minimum carotenoid content in the control treatment (0.81 mg).

Conclusion: The results indicated that the roots of the Lavandula angustifolia established a symbiotic relationship with most of the mycorrhizal fungi used in this research. As a result, most of the plant indices and phytochemical factors examined in this study demonstrated a significant increase compared to the control treatment. According to the obtained results, the species G. mosseae, G. intraradices, and G. geosporum can provide optimal conditions for the growth and desirable production of the multifunctional lavender plant, making them suitable biofertilizer alternatives to chemical fertilizers. Therefore, based on the findings of the present research and considering the compatibility of mycorrhizae with the environment and various environmental stresses, the use of these fungi to enhance the performance of lavender plants is recommended.
Background and objectives: Mycorrhiza are soil fungi that facilitate plants' access to nutrients through symbiosis with plant roots and the production of a biological system. By increasing productivity, they improve plant establishment and resistance to environmental stresses. Compared to plant roots, mycorrhizal fungal hyphae spread over a wider area of soil, making nutrients available to plants. Fungi enhance plant growth by absorbing minerals from the soil and making plants more resistant to environmental stresses. They act as a biological fertilizer, increasing the activity of soil organisms, and improve soil structure, which leads to better plant growth.This article examines the effects of five mycorrhizal fungi symbiosis with the medicinal plant Lavandula angustifolia on some plant indices and its phytochemical factors.

Materials and methods: The present study was conducted as a completely randomized design with 6 treatments, 5 replications, and a total of 30 pots. The treatments included inoculation of various species of mycorrhizal fungi from the genus Glomus (G. intraradices, G. geosporum, G. mosseae, G. fasciculatum, G. versiform) and controls. At the end of the growing season, some plant indices (plant length, number of lateral branches, number of leaves per branch, leaf length and width, stem diameter, dry weight of aerial organs, and dry weight of roots) and phytochemical factors (content of total phenolic and flavonoid compounds, antioxidant capacity, proline content, as well as photosynthetic pigments including chlorophyll a, b, total chlorophyll, and carotenoids) of Lavandula angustifolia were measured.The data were analyzed using SPSS software (Version 21), and their normality was checked using the Kolmogorov-Smirnov test. After analysis of variance, mean comparisons were performed using Duncan's test.

Results: The results indicated that most mycorrhizal fungi had a significant effect (p< 0.01)on most of plant indices and phytochemical factors of Lavandula angustifolia. Thus, in plants individuals inoculated with the fungi G. mosseae, G. geosporum, and G. intraradices a significant increase (p< 0.01) in most plant indices was observed. Notably, the mycorrhizal fungi significantly affected traits such as the number of lateral branches, stem diameter, number of leaves per branch, and the dry weight of both roots and aerial parts (p< 0.01). Additionally, inoculation with these fungi had a positive effect on improving the content of phenolic compounds, flavonoids, and antioxidant capacity of the plant. Results from mean comparisons demonstrated the maximum carotenoid content in the treatment using the species G. mosseae (1.85 mg) and the minimum carotenoid content in the control treatment (0.81 mg).

Conclusion: The results indicated that the roots of the Lavandula angustifolia established a symbiotic relationship with most of the mycorrhizal fungi used in this research. As a result, most of the plant indices and phytochemical factors examined in this study demonstrated a significant increase compared to the control treatment. According to the obtained results, the species G. mosseae, G. intraradices, and G. geosporum can provide optimal conditions for the growth and desirable production of the multifunctional lavender plant, making them suitable biofertilizer alternatives to chemical fertilizers. Therefore, based on the findings of the present research and considering the compatibility of mycorrhizae with the environment and various environmental stresses, the use of these fungi to enhance the performance of lavender plants is recommended.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Soil nutrients
  • Yield increase
  • Biofertilizer
  • Lavandula angustifolia

مراجع

1.Ghorbani, R. (2015). Effect of humic acid pretreatment on germination and growth of marigold under drought stress. Master's thesis. Faculty of Agriculture, Birjand University.
2.Moradi Tarnabi, Z., Iranbakhsh, A., Mehregan, I., & Ahmadvand, R. (2020). Impact of arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) on gene expression of some cell wall and membrane elements of wheat (Triticum aestivum L.) under water deficit using transcriptome analysis. Physiol Mol Biol Plants. 26(1), 143-162.
3.Razavi, S., Jahan, M., Nasiri mahalati, M., & Hajmohammadnia Ghalibaf, K. (2017). Radiation Absorption and Use Efficiency of Common Mallow (Malva sylvestris L.) Affected by Different Sources of Organic, Biological and Chemical Fertilizers and Intercropping with Fenugreek (Trigonella foenum-graecum). Iranian J. of Field Crops Research. 15(1), 136-149.
4.Azarnia, M., Safikhani, S., & Biabani, A. (2015). The effect of bio-fertilizer on crops yield, sustainable agriculture and organic farming. Journal of Biosafety, 8(2), 85-97. [In Persian]
5.Hughes, J. K., Hodge, A., Fitter, A. H., & Atkin, O. K. (2008). Mycorrhizal respiration: implications for global scaling relationships. Trends Plant Sci., 13(11), 583-588.
6.Ganugi, P., Masoni, A., Pietramellara, G., & Benedettelli, S. A. (2019). Review of studies from the last twenty years on plant–arbuscular mycorrhizal fungi associations and their uses for wheat crops. Agronomy, 9, 840-854.
7.Souza, T. (2015). Handbook of Arbuscular Mycorrhizal Fungi. Springer, Switzerland. 153 p.
8.Abbasi, H., Akhtar, A., & Sharf, R. (2015). Vesicular arbuscular mycorrhizal (VAM) fungi: A tool for sustainable agriculture. American Journal of Plant Nutrition and Fertilization Technology, 5, 40-49.
9.Maltz, M. R., & Treseder, K. (2015). Sources of inocula influence mycorrhizal colonization of plants in restoration projects: A meta-analysis. Restoration Ecology, 23(5), 625-634.
10.Zare, M., Siroosmehr, A., & Abdkhani, S. (2015). Effects of mycorrhizal fungi on morphological and physiological parameters of Sorghum (Sorghum bicolor) under chrome stress. Rangeland, 9(2), 159-169. [In Persian]
11.Bago, B., Pfeffer, P. E., & Shachar-Hill, Y. (2000). Carbon metabolism and transport in arbuscular mycorrhizas. Plant Physiology, 124, 949-957.
12.Querejeta, J. I., Allen, M. F., Alguacil, M. M., & Roldan, A. (2007). Plant isotopic composition provides insight into mechanisms underlying growth stimulation by AM Fungi in a semiarid environment. Journal of Functional Plant Biology, 34, 683-691.
13.Auge, R. M. (2001). Stomatal behavior of arbuscular mycorrhizal plant: 201-237. In: Kapulnik, Y. and Douds, D.D., (Eds.). Arbuscular Mycorrhizas: Physiology and Function. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, the Netherlands, 365p.
14.Kheyri, Z., Moghaddam, M., & Moradi, M. (2020). Study the effect of different mycorrhizal fungi on some growth indices, photosynthetic pigments, flavonoids and carotenoid content of pot marigold flower. Journal of Horticultural Plants Nutrition, 3(1), 37-50.
15.Saleh Rastin, N. (1998). Biological fertilizers. Journal of soil and water sciences, 12(3), 1-36. [In Persian]
16.Ali Asgharzad, N. (1997). Soil Microbiology and Biochemistry (Translation 9), First Edition. University of Tabriz Press. [In Persian]
17.Hazzoumi, Z., Moustakime, Y., Elharchli, E., & Amrani Joutei, KH. (2015). Effect of arbuscular mycorrhizal fungi and water stress on ultrastructural change of glandular hairs and essential oil compositions in Ocimum gratissimum. Chemical and Biological Technologies in Agriculture. 2, 1-10.
18.Mazaraie, A., Sirousmehr, A. R., & Babaei, Z. (2017). Effect of mycorrhizal fungi on some morphological & physiological characteristics of Milk thistle (Silybum marianum (L.) Gaertn.) under drought stress. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 33 (4), 620-635. [In Persian]
19.Zare Hassanabdi, M., Dashti, M., & Akhondi, M. (2020). The effect of two species of arbuscular mycorrhiza fungi on the activity of antioxidant enzymes and morphophysiological characteristics of Mentha pulegium L. in drought stress. Iranian Medicinal Plants Technology, 2(2), 83-99. [In Persian]
20.Hovland, M., Mata-González, R., Schreiner, R. P., & Rodhouse, T. J. (2019). Fungal facilitation in rangelands: Do arbuscular mycorrhizal fungi mediate resilience and resistance in sagebrush steppe? Rangeland ecology & management, 72(4), 678-691.
21.Fattahi, B., Almasi, R., & Ghasemi Hajiabadi, F. (2022). Changes of morphological characteristics and nutrients of Bromus tomentellus under the influence of coexistence with mycorrhiza fungi for use in range seeding operation. Rangeland, 15(4), 665-676.
22.Yazdanpanah Gohari, A., Ghanbari Jahromi, M., & Zarrinnia, V. (2021). Effect of Some Mycorrhizal Fungi Species on Quantitative and Qualitative Properties of Two Landraces of Chicory in Greenhouse Conditions. Journal of Crop Improvement. 24(2), 527-544.
23.Sahib Hasan, M., Selahvarzi, Y., Nabati, J., & Aziz, M. (2020). Effect of mycorrhiza fungi and plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on antioxidant capacity and some morphophysiological traits of medicinal marigold (Calendula officinalis Linn.) under drought stress. Environmental Stress in Crop Sciences. 13(2), 425-440.
24.Dodd, I. C., & Pérez-Alfocea, F. (2012). Microbial amelioration of crop salinity stress. Journal of Experimental Botany. 63(9), 3415-3428.
25.Kapoor, R., Giri, B., & Mukerji, K. G. (2004). Improved growth and essential oil yield and quality in (foeniculum vulgare Mill.) on mycorrhizal inoculation supplemented with p-fertilizer. Bio resource Technology. 93, 307-311.
26.Copetta, A., Lingua, G., & Berta, G. (2006). Effects of three AM fungi on growth, distribution of glandular hairs, and essential oil production in Ocimum basilicum L. var. Genovese. Mycorrhiza. 16, 485-494.
27.Chaghani, Z., Zolfaghari, M., Sedighi Dehkordi, F., & Mahmoudi Surestani, M. (2018). The effect of mycorrhizal fungi, growth-promoting bacteria and chemical fertilizers on the yield and essential oil content of dill seeds (Lanethum graveolens). Journal of Agricultural Knowledge and Sustainable Production. 82(4), 93-104.
28.Weisany, W., Raei, Y., Zehtab Salmasi, S., & Sohrabi, Y. (2016). Effect of Arbuscular Mycorrhiza Fungi on Yield and Yield Components of Common Bean (Phaseolus vulgaris L.) and Dill (Anethum graveolens L.) in Mono and Intercropping System. Journal of Agricultural Science and Sustainable Production, 26(3), 1-19. [In Persian]
29.Azimi, R., Jangju M., & Asghari, H. (2014). The effect of mycorrhizal fungus inoculation on seedling establishment and morphological characteristics of Bromus kopetdaghensis growth in rangeland conditions. Range and Watershed Management. 4, 559-570.
30.Tavakoli Neko, H., Haji Mirrahimi, S. D., & Moradi, M. R. (2017). The entrepreneurship package of Lavandula angustifolia cultivation. Tehran: Asrar Alam, 61 p.
31.Kormanik, P. P., & McGraw, A. C. (1982). Quantification of vesicular-arbuscular mycorrhizae in plant roots. In: Schenck N.C. (ed.). Methods and principles of mycorrhizal research. American Phytopathological Society,
St. Paul, MN, pp. 37-45.
32.Dorman, H. J. D., Peltoketo, A., Hiltunen, R., & Tikkanen, M. J. (2003). Characterisation of the antioxidant properties of de-odourised aqueos extracts from selected Lamiaceae herbs. Food Chemistry, 83, 255-262.
33.Chang, Y. L., Kim, D. O., Lee, K. W., Lee, H. J., & Lee, C. Y. (2002). Vitamin C equivalent antioxidant capacity (VCEAC) of phenolic phytochemicals. Journal of Agricultural and food chemistry, 50(13), 3713-3717.
34.Mashayikhi, K., & Atashi, P. (2013). Analytical methods in plant physiology (pre-harvest and post-harvest examination). Gorgan, 310 p.
35.Lutts, S., Kinet, J. M., & Bouharmont, J. (1996). NaCl-induced senescence in leaves of rice (Oryza sativa L.) cultivars differing in salinity resistance. Annals of Botany. 78(3), 389-398.
36.Bates, L. S., Waldern, R. P., & Tear, I. D. (1973). Rapid determination of free praline for water stress studies. Plant and Soil. 39, 205-207.
37.Mahmoudzadeh, M., Rasouli Sadaghiani, M. H., Asgari Lajayer, H., & Hasani, A. (2016). The effect of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) and arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) inoculation on nutrient uptake and some morphological factors in peppermint (Mentha piperita). Electronic Journal of Soil Management and Sustainable Production. 6(1), 161-176.
38.Shabahang, J., Khorramdel, S., Siahmargue, A., Gheshm, R., & Jafari, L. (2014). Evaluation of integrated management of organic manure application and mycorrhiza inoculation on growth criteria, qualitative and essential oil yield of hyssop (Hyssopus officinalis L.) under Mashhad climatic conditions. Journal of Agroecology. 6(2), 353-363.
39.Azimi, R., Janghol, M., & Asghari, H. R. (2013). The effect of inoculation with mycorrhizal fungi on the initial establishment and morphological characteristics of the plant. Iranian Journal of Agricultural Research, 11(4), 666-676.
40.Hashemzadeh, F., Mirshakari, B., Yarnia, M., Rahimzadeh Khoei, F., & Tarinejad, A. R. (2013). The role of biological and chemical fertilizers, nitrogen and phosphorus on yield, yield components and percentage of mycorrhizal symbiosis. Ecophysiology of Crop Plants, 3 (31), 257-270.
41.Irankhah, S., Ganjali, A., Lahoti, M., & Mashrekhi, M. (2016). Investigating the effect of bacteria on some morphological and biochemical traits of fenugreek plant. Journal of Horticultural Sciences (Agricultural Sciences and Industries). 30 (1), 112-121.
42.Rapparini, F., Liusia, J., & Penuelas, J. (2008). Effect of arbuscular mycorrhiza colonization on terpen emission and content of Artemisia annua L. Plant Biology. 10(1), 108-122.
43.Sensoy, S., Demir, S., Turkmen, O., Erdinc, C., & Savur, O. (2007). Responses of some different pepper (Capsicum annum L.) genotypes to inoculation with two different arbuscular mycorrhizal fungi. Scientia Horticulturae. 113, 92-95.
44.Chaudhary, V., Kapoor, R., & Bhatnagar, A. K. (2008). Effectiveness of two arbuscular mycorrhizal fungi on concentrations of essential oil and artemisinin in three accessions of Artemisia annual L. Applied Soil Ecology. 40, 174-181.
45.Sharma, A. K. (2002). Biofertilizers for Sustainable Agriculture. Agrbis India, pp. 407.
46.Ghasem Jokar, N., Nadian, H., Khalil Moghaddam, B., Heidary, M., & Gharineh, M. H. (2015). Influence of mycorrhizal symbiosis on growth and proline content in Leek (Allium porrum L.) and two genotypes of persian Leek (Allium ampeloprasum ssp. persicum L.) under drought stress. Plant products. 38(1), 15-26.
47.Ruiz-Lozano, J. M. (2003). Arbuscular mycorrhizal symbiosis & alleviation of osmotic stress, new perspectives for molecular studies. Mycorrhiza, 13, 309-317.
48.Munne-Bosch, S., & Alegre, L. (2004). Die and let live: leaf senescence contributes to plants survival under drought stress. Functional Plant Biology, 31(3), 203-216.
49.Zimare, S. B., Borde, M. Y., Jite, P. K., & Malpathak, N. P. (2013). Effect of AM Fungi (Gf, Gm) on Biomass and Gymnemic Acid Content ofGymnema Sylvestre (Retz.). The Proceedings of the National Academy of Sciences.
50.Riter Netto, A. F., Freitas, M. S., Martins, M. A., Carvalho, A. J., & Vitorazi Filho, J. Á. (2014). Efeito de fungos micorrízicos arbusculares na bioprodução de fenóis totais e no crescimento de Passiflora alata Curtis. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, 16, 1-9.
51.Zhang, R. Q., Zhu, H. H., Zhao, H. Q., & Yao, Q. (2013). Arbuscular mycorrhizal fungal inoculation increases phenolic synthesis in clover roots via hydrogen peroxide, salicylic acid and nitric oxide signaling pathways. Journal of Plant Physiology, 170(1), 74-79.
52.Baslam, M., & Goicoechea, N. (2012). Water deficit improved the capacity of arbuscular mycorrhizal fungi (AM FUNGI) for inducing the accumulation of antioxidant compounds in lettuce leaves. Mycorrhiza, 22, 347-359.
53.Hristozkova, M., Gigova, L., Geneva Stancheva, I., Vasileva, I., Sichanova, M., & Mincheva, J. (2017). Mycorrhizal fungi and microalgae modulate antioxidant capacity of basil plants. Journal of Plant Protection Research, 57(4), 10 pp.
54.Tabrizi, L., Mohammadi, S., Delshad, M., & Moteshare Zadeh, B. (2015). Effect of arbuscular mycorrhizal fungi on yield and phytoremediation performance of pot marigold (Calendula officinalis L.) under heavy metals stress. International Journal of Phytoremediation. 17(12), 1244-1252.
55.Dejabon, F. (2011). Evaluation of the use of organic inputs and drying methods in the production of Calendula officinalis. Tehran University of Agriculture and Natural Resources Campus.
56.Bodker, L., Kjoller, R., Kristensen, K., & Rosendahl, S. (2002). Interactions between indigenous arbuscular mycorrhizal fungi and Aphanomyces euteiches in field-grown pea. Mycorrhiza, 12, 7-12.
57.Pozo, M. J., Jung, S. C., Lopez-Raez, J. A., & Azcón-Aguilar, C. (2010). Impact of arbuscular mycorrhizal symbiosis on plant response to biotic stress: The role of plant defense mechanisms. pp. 193–207. In: H. Koltai & Y. Kapulnik (eds.), Arbuscular Mycorrhizas: Physiology and Function. Springer, Netherlands, Dordrecht.
58.Song, Y. Y., Cao, M., Xie, L. J., Liang, X. T., Zeng, R. S., Su, Y. J., Huang, J. H., Wang, R. L., & Luo, S. M. (2011). Induction of DIMBOA accumulation and systemic defense responses as a mechanism of enhanced resistance of mycorrhizal corn (Zea mays) to sheath blight. Mycorrhiza, 21, 721-731.
59.Van der Ent, S., Van Wees, S. M., & Pieterse, C. J. (2009). Jasmonate signaling in plant interactions with resistanceinducing beneficial microbes. Phytochemistry, 70, 1581-1588.
60.Smith, T. J., Smith, F. A., & Jakobsen, I. (2020). Functional diversity in arbuscular mycorrhizal (AM) symbioses: The contribution of the mycorrhizal P uptake pathway is not correlated with mycorrhizal responses in growth or total P uptake. New Phytologis. 226(5), 1362-1375.
61.Zuzarte, M., et al. (2013). Chemistry & Biodiversity, 10(5), 870-882.
62.Elhindi, K. M., El-Din, A. S., & Elgorban, A. M. (2017). The impact of arbuscular mycorrhizal fungi in mitigating salt-induced adverse effects in sweet basil (Ocimum basilicum L.). Scientia Horticulturae, 214, 74-84.
63.Moraes, R. M., Andrade, Z. D., Bedir, E., Dayan, F. E., Lata, H., Khan, I., & Pereira, A. M. S. (2004). Arbuscular mycorrhiza improves acclimatization and increases lignin content of micropropagated mayapple (Podophyllum peltatum L.). Plant Science. 166, 23-29.
64.Adolfsson, L., Solymosi, K., Andersson, M. X., Keresztes, A., Uddling, J., & Schoefs, B. (2015). Mycorrhiza symbiosis increases the surface for sunlight capture in Medicago truncatula for better hotosynthetic production. PLoS ONE, 10(1), e0115314.
65.Romero-Munar, A., Del-Saz, N. F., Ribas-Carbó, M., Flexas, J., Baraza, E., & Florez-Sarasa, I. (2017). Arbuscular mycorrhizal symbiosis with Arundo donax decreases root respiration and increases both photosynthesis and plant biomass accumulation. Plant Cell Environ, 40 (7), 1115-1126.
66.Zhang, T., Hu, Y., Zhang, K., Tian, C., & Guo, J. (2018). Arbuscular mycorrhizal fungi improve plant growth of Ricinus communis by altering photosynthetic properties and increasing pigments under drought and salt stress. Industrial Crops and Products, 117, 13-19.
67.Demir, S. (2005). Influence of arbuscular mycorrhiza on some physiological growth parameters of pepper. Turkish Journal of Biology. 28(2-4), 85-90.
68.Gogoi, P., & Singh, R. K. (2011). Different effect of some arbuscular mycorrhizal fungi on growth of Piper longum L. (Piperaceae). IndianJournal of Sciences and Technology. 4(2), 119-125.
69.Chaudhary, V., Kapoor, R., & Bhatnagar, A. K. (2007). Effect of arbuscular mycorrhiza and phosphorus application on artemisinin concentration in Artemisia annua L. Mycorrhiza. 17, 581-587.
70.Selvaraj, T., & Chellappan, P. (2006). Arbuscular mycorrhizae: a diverse personality. Journal of Central European Agriculture. 7(2), 349-358.
71.Tang, M., Chen, H., Huang, G. C., & Tian, Z. Q. (2009). Am fungi effects on the growth and physiology of Zea mays L. seedlings under diesel stress. Soil Biology and Biochemistry. 41, 936-940.
72.Smith, S. E., & Read, D. J. (2008). Mycorrhizal Symbiosis. (3rd ed.). Academic Press.
73.Rillig, M. C., & Mummey, D. L. (2006). Mycorrhizas and soil structure. New Phytologist, 171(1), 41-53.
مجله پژوهش‌های حفاظت آب و خاک
دوره 33، شماره 2
تیر 1405
صفحه 89-113

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار